求助:畢赤酵母感受態(tài)細(xì)胞的制備方法
求助:畢赤酵母感受態(tài)細(xì)胞的制備方法
(1) 試劑;- 使用去離子蒸餾水配制1M LiCl,并通過濾膜過濾除菌。必要時,可用消毒去離子水稀釋。- 50% PEG3350(Sigma P3640)配制時,也需通過濾膜過濾除菌,并使用緊蓋瓶分裝。- 2mg/ml鮭魚精DNA/TE(10mM Tris-Cl.pH8.0.1.0mM EDTA)應(yīng)在-20℃保存。(2) 感受態(tài)畢氏酵母的制備。- 在50ml YPD培養(yǎng)基中接種Pachia pastoris,30℃搖菌過夜,直至OD值為0.8~1.0(約10^8 Cells/ml)。- 收獲細(xì)胞后,用25ml無菌水洗滌一次,室溫下1500g離心10min。- 重懸細(xì)胞于1ml 100mM LiCl溶液中,轉(zhuǎn)入1.5ml離心管。
導(dǎo)讀(1) 試劑;- 使用去離子蒸餾水配制1M LiCl,并通過濾膜過濾除菌。必要時,可用消毒去離子水稀釋。- 50% PEG3350(Sigma P3640)配制時,也需通過濾膜過濾除菌,并使用緊蓋瓶分裝。- 2mg/ml鮭魚精DNA/TE(10mM Tris-Cl.pH8.0.1.0mM EDTA)應(yīng)在-20℃保存。(2) 感受態(tài)畢氏酵母的制備。- 在50ml YPD培養(yǎng)基中接種Pachia pastoris,30℃搖菌過夜,直至OD值為0.8~1.0(約10^8 Cells/ml)。- 收獲細(xì)胞后,用25ml無菌水洗滌一次,室溫下1500g離心10min。- 重懸細(xì)胞于1ml 100mM LiCl溶液中,轉(zhuǎn)入1.5ml離心管。
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1、畢氏酵母氯化鋰轉(zhuǎn)化法(1) 試劑- 使用去離子蒸餾水配制1M LiCl,并通過濾膜過濾除菌。必要時,可用消毒去離子水稀釋。- 50% PEG3350(Sigma P3640)配制時,也需通過濾膜過濾除菌,并使用緊蓋瓶分裝。- 2mg/ml鮭魚精DNA/TE(10mM Tris-Cl, pH8.0, 1.0mM EDTA)應(yīng)在-20℃保存。(2) 感受態(tài)畢氏酵母的制備- 在50ml YPD培養(yǎng)基中接種Pachia pastoris,30℃搖菌過夜,直至OD值為0.8~1.0(約10^8 Cells/ml)。- 收獲細(xì)胞后,用25ml無菌水洗滌一次,室溫下1500g離心10min。- 重懸細(xì)胞于1ml 100mM LiCl溶液中,轉(zhuǎn)入1.5ml離心管。- 離心機(jī)最大速度離心15秒沉淀菌體,隨后重懸菌體于400ul 100mM LiCl溶液中。- 按50ul/管分裝,立即進(jìn)行轉(zhuǎn)化。(3) 畢氏酵母的轉(zhuǎn)化- 煮沸1ml鮭魚精DNA 5min,然后迅速冰浴以制備單鏈擔(dān)體DNA。- 離心去除感受態(tài)酵母菌的殘余LiCl溶液。- 轉(zhuǎn)化時,按順序加入50% PEG3350、1M LiCl、2mg/ml 單鏈Salmon sperm DNA和質(zhì)粒DNA。- 劇烈旋渦混勻直至沉淀菌體完全分布均勻。- 30℃水浴孵育30min;42℃水浴熱休克20~25min。- 6000~8000rpm離心收集酵母菌體;重懸酵母于1ml YPD培養(yǎng)基,30℃搖床孵育。- 1~4h后,取25~100ul菌液鋪選擇性培養(yǎng)基平板,30℃培養(yǎng)2~3天以鑒定。2、畢氏酵母PEG1000轉(zhuǎn)化法(1) 試劑- 緩沖液A(1.0M Sorbitol,10mM Bicine,pH8.35)、緩沖液B(40% PEG1000,0.2M Bicine,pH8.35)和緩沖液C(0.15M NaCl,10mM Bicine,pH8.35)均通過濾膜過濾,并在-20℃保存。- 試劑級DMSO應(yīng)-70℃保存。(2) 待轉(zhuǎn)化畢氏酵母的制備- 從YPD平板上挑取單克隆酵母菌株,于10ml YPD培養(yǎng)基中30℃振蕩培養(yǎng)過夜。- 取適量菌液接種到100ml YPD培養(yǎng)基中振蕩培養(yǎng),直至OD值達(dá)到0.5~0.8。- 室溫下3000g離心收集酵母菌體,用50ml緩沖液A洗滌一次。- 重懸菌體于4ml緩沖液A中,按0.2ml/管分裝于1.5ml離心管中,每管加入11ul DMSO,混合后迅速于液氮中冷凍,-70℃保存。(3) 畢氏酵母的轉(zhuǎn)化- 將約50ug線性化質(zhì)粒DNA溶于20ul TE或水中,直接加于凍結(jié)的酵母細(xì)胞中。加入擔(dān)體DNA以獲得最大轉(zhuǎn)化率。- 37℃水浴孵育5min,中間混合樣品1~2次。- 取出離心管,加入1.5ml緩沖液B,徹底混勻。- 30℃水浴孵育1h。- 室溫下2000g離心10min,去除上清液,菌體沉淀重懸于1.5ml緩沖液C中。- 再次離心去除上清液,輕微操作將樣品重懸于0.2ml緩沖液C中。- 將所有轉(zhuǎn)化液鋪于選擇性平板,30℃孵育3~4天后,鑒定。3、畢氏酵母電轉(zhuǎn)化法(1) E.coli TOP10F’感受態(tài)細(xì)胞的制備- 從200ml LB液體培養(yǎng)基中活化的TOP10F’菌液中取10ul,接種于滅菌的500ml離心管中,37℃,200 rpm,培養(yǎng)16~18小時。- 取100ul菌液接種于200ml液體LB培養(yǎng)基中,37℃,200 rpm,繼續(xù)培養(yǎng)16~18小時。- 滅菌后,4℃、4000 rpm離心20min,收集菌體沉淀,棄上清,用10%甘油重懸并洗滌,重復(fù)洗滌3次。- 第三次離心后,棄去絕大部分上清,留下約1ml液體用于重懸菌體。- 從制得的感受態(tài)細(xì)胞中,取200ul于滅菌EP管中,加入連接反應(yīng)產(chǎn)物5ul,混勻,不要產(chǎn)生氣泡,在冰上放置5min。- 將混勻后的200ul菌液移入電擊杯中。- 使用電擊穿孔儀進(jìn)行轉(zhuǎn)化,設(shè)置為電壓2500V,時間5ms。- 電擊后,加入800ul SOC培養(yǎng)基沖洗出菌體,轉(zhuǎn)移至滅菌1.5ml EP管中,37℃,150 rpm,輕搖45~60min。- 取全部菌液均勻涂布于含Zeocin 25ug/ml的LLB-Zeocin平板上,正放,待涂布液不在流動,37℃培養(yǎng)12~16小時。(2) 線性化質(zhì)粒DNA對Pichia pastoris GS115的轉(zhuǎn)化- 從-70℃中取出的新鮮或保存的感受態(tài)細(xì)胞,在冰浴中完全解凍。- 將100μl菌體移至一新的無菌Eppendorf管中,加入5-20μg線性化質(zhì)粒(5~10μl),輕彈混勻,然后轉(zhuǎn)移至0.2cm型的電穿孔轉(zhuǎn)化杯中。- 轉(zhuǎn)化杯置于冰浴中5~10分鐘,保持低溫。- 電穿孔轉(zhuǎn)化電擊條件:電壓1500V;電阻400Ω;電容25μF;脈沖時間10mS;一次電擊。- 電擊后,馬上在電擊轉(zhuǎn)化杯中加入1ml 4℃預(yù)冷的1M的山梨醇溶液,用微量移液槍吹打均勻,置于冰浴中。- 取30℃烘至表面半干的MD培養(yǎng)基平板,在超凈工作臺上無菌操作涂布平板,400μl/板。詳情
求助:畢赤酵母感受態(tài)細(xì)胞的制備方法
(1) 試劑;- 使用去離子蒸餾水配制1M LiCl,并通過濾膜過濾除菌。必要時,可用消毒去離子水稀釋。- 50% PEG3350(Sigma P3640)配制時,也需通過濾膜過濾除菌,并使用緊蓋瓶分裝。- 2mg/ml鮭魚精DNA/TE(10mM Tris-Cl.pH8.0.1.0mM EDTA)應(yīng)在-20℃保存。(2) 感受態(tài)畢氏酵母的制備。- 在50ml YPD培養(yǎng)基中接種Pachia pastoris,30℃搖菌過夜,直至OD值為0.8~1.0(約10^8 Cells/ml)。- 收獲細(xì)胞后,用25ml無菌水洗滌一次,室溫下1500g離心10min。- 重懸細(xì)胞于1ml 100mM LiCl溶液中,轉(zhuǎn)入1.5ml離心管。
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